Propagation in vitro of Quishuar (Buddleja incana RUÍZ & PAV).

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Paola Jiménez Enriquez https://orcid.org/0000-0001-7026-8537
Paulo Barrera Aguilar https://orcid.org/0000-0003-1465-1114
Laura Elizabeth Huachi Espín http://orcid.org/0000-0002-8413-3534
Antonio Vera Zambrano https://orcid.org/0000-0002-9136-8825
Carlos Caicedo Vargas https://orcid.org/0000-0002-2777-5282

Abstract

Quishuar is a forest species valued for its uses. Intensive exploitation and unsatisfied offer have been limiting factors for reforestation programs. Micropropagation is a technique to eradicate this problem since its goal is to produce many plants in less time. The aim of this study was develop in vitro disinfection; establishment, and multiplication protocols, for this purpose seeds and buds of nursery plants were cultured. In the first phase with seeds, exposed to kilol and benomil, along with NaOCl 3 % (10 min), resulted germination percentage was 100 % in MS (Murashige y Skoog) and contamination and oxidation percentage to 0 %. On the other hand, shoots with fungicides, antioxidants and NaOCl 1 % (10 min), didn´t showed contamination and oxidation. Sprouting percentage was 100 % in WPM (Woody Plant Medium). In the second phase, the greater bud length (1.95 cm), knots number (1.94 knots) and multiplication rate (2.67) were reported in MS without hormones. Based on the results, protocols were effective for in vitro propagation.
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References

Agramonte, D., Delgado, L., Trocones, A., Pérez, M., Ramirez, D., Gutiérrez, O. 2001. Micropropagación del Eucalyptus grandis (Hill ex Maiden) a partir de segmentos nodales. Biotecnología vegetal Vol 1 No2: 109-114.

Azofeifa, A. 2009. Problemas de oxidación y oscurecimiento de explantes in vitro. Agronomía mesoamericana 20 (1): 153-175.

Billard, C.E., Dalzotto, C.A., Lallana, V.H. 2014. Desinfección y siembra asimbiótica de semillas de dos especies y una variedad de orquideas del género Oncidium. Revista Polibotanica, 38: 145-157.

Cárdenas, M. 2011. Determinación del protocolo de establecimiento y multiplicación in vitro de Quishuar (Buddleja incana) a partir de yemas axilares de plantas madre, como una herramienta para la preservación de esta especie dentro del Distrito Metropolitano de Quito. Tesis de Ingeniería en Biotecnología, Escuela Superior Politécnica del Ejército, Quito, Ecuador.

Delgado, M., Hechenleitner, P., y Thiers, O. 2008. Propagación vegetativa de taique (Desfontainia spinosa) y tepa (Laureliopsis philippana) con fines ornamentales. Revista Bosque, 29 (2): 120-126.

Gárate, M. 2010. Técnicas de propagación por estacas. Tesis de Ingeniero Agrónomo, Universidad Nacional de Ucayali. Ucayali, Perú.

García, L., Moreno, L., Pérez, M., La O, M., Padrón, Y., Rodríguez, Y., Rivero, L. 2018. Protocolo para la micropropagación de Anthurium cubense Engler a partir de semilla botánica. Biotecnología Vegetal 18 (3): 161-166

Gómez, M. 2006. Evaluación de alternativas silvopastoriles utilizando yagual (Polylepis racemosa), Quishuar (Buddleja incana), colle (Buddleja coriacea) en la microcuenca del Río Chimborazo. Tesis de Ingeniero Agropecuario, Escuela Politécnica del Ejército. Riobamba, Ecuador.

González, H. 2010. Evaluación de la eficacia in vitro de productos naturales y químicos en el control de especies fúngicas que afectan al cultivo de Musa paradisiaca. Informe técnico (1):1-24

Gutiérrez, LG. 2002. Embriogénesis somática en Alnus acuminata H.B.K. y estudio de la variación somaclonal mediante marcadores moleculares. Tesis Doctoral. Universidad Politécnica de Valencia; 300.

Guzmán M. 1975. El error experimental en la investigación científica: Cuantificación de elementos contribuyentes. Boletín de la Oficina Sanitaria Panamericana.

Grijalva, J., Ramos, R., Checa, X., Anti, A., Barrera, P., y Telenchano, A. 2012. Gestión sostenible de microcuencas en los Andes. Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias, Programa Nacional de Forestería, Quito. Revista Informativa INIAP (7): 11-13.

Hernández, C., Lopera, M., Mora, B., Cárdenas, J. 1999. Desarrollo de un protocolo para la propagación masiva de la mora de castilla (Rubus glaucus Bent) mediante la utilización del cultivo de tejidos vegetales in vitro. Revista Actual Biol21 (70):3-12.

Jiménez, L., Silva, J., Borges, M., y Fonseca, M. 2016. Conservación in vitro de clavel español (Dianthus caryophyllus L) a partir de sales minerales. Revista Agronomía Mesoamericana 27 (1). doi: dx.doi.org/10.15517/am.v27i1.21897

Jiménez, VM., Castillo, J., Tavares, E., Guevara, E., Montiel, M. 2001. Micropropagación de Guadua angustifolia Kunth a partir de explantes nodales. Memorias del Simposio Internacional Guadua. Pereira, Colombia: Universidad Tecnológica de Pereira.

Laboratorio de Cultivo de Tejidos (LCT-INIAP). 2014. Informe Técnico. Protocolos de desinfección de especies forestales. Informes Iniap (1): 20-60

Luna C, Sansberro J, Mroginski L, Tarragó J. 2003. Micropropagation of Ilex dumosa from nodal segments in a tissue culture system. Biocell 27(2), 120-135.

Marulanda., ML., e Isaza LV. Establecimiento in vitro de heliconias con fines de producción masiva. Scientia et Technica. 2004; 26: 193-197.

Ministerio del Ambiente-MAE. 2005. Informe técnico de árboles del Ecuador. Ecuador.

Murashige, T., y Skoog, F. 1962. A revised medium for rapid growth and biossays with tobacco tissue cultures. Physiological Plantarum 15: 473-497

Núñez, J., Quiala, E., De Feria, M., Mestanza, S., Teanga, S. 2017.Propagación in vitro de Caesalpiniaspinosa (Mol.) O. Kuntz a partir de yemas axilares de árboles plus seleccionadas. Revista Biotecnología Vegetal, 17(2): 67-75.

Parada, D. 2009. Propagación in vitro del híbrido Almendro x Durazno H1. Revista Fitotecnia mexicana , 32 (2): 103-109. 2017.

Piqueras, A., y Debergh, P. 2000. Morphogenesis in micropro Morphogenesis in micropropagation. In: Morphogenesis in Plant Tissue Cultures. Edited by Soh, W.-Y. and Bhojwani, S. S. Kluwers Academics Publishers pp. 443-462.

Rahman, S M., Hossain, M., Biswas, BK., Joarder, OI., Islam, R. 1993. Micropropagation of Caesalpinia pulcherrima through nodal bud culture of mature tree. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 32: 363-365; doi: 10.1007/BF00042301

Reyes, H., y Hewstone, N. 1994. Cultura de tejidos en la agricultura. Revista Tierra Adentro No. 24, 30-33.

Sánchez, Y. 2012. Elaboración de tablas de volúmenes y determinación de factores de forma de las especies forestales: Chuncho (Cedrelinga catenaeformis), Laurel (Cordia alliadora), Sangre de Gallina (Otoba sp), Ceibo (Ceiba samauma) y Canelo (Nectandra sp). Tesis de Ingeniería Forestal, Escuela Superior Politécnica de Chimborazo. Riobamba, Ecuador.

Saucedo, S., Ramos, L., y Reyes, T. 2009. Efecto de los reguladores de crecimiento para la propagación in vitro de Malanga (Xanthosoma sagittifolium). Revista Cienica y Tecnología (1) 1: 17-21.

Sedlak, J., Paprstein, F. 2009. In vitro multiplication of highbush blueberry (Vaccinium Corymbosum L.) cultivars. Acta Hortic. 810, 575-580. DOI: 10.17660/ActaHortic.2009.810.76

Soto, B., Valverde, L., Rojas, A., y Gómez, A. 2010. Establecimiento in vitro de Cedrela salvadorensis. Revista Tecnología en marcha, 23 (4): 66-73.

Vallejo, S. 1988. Micropropagación de tejidos vegetales de Quishuar (Buddleja incana), Cedro (Cedrela montana) y Pumamaqui (Oreopanax ecuadorensis). Tesis de Ingeniería Agrónoma, Escuela Politécnica de Chimborazo. Quito- Ecuador.

Vinueza, D. 2013. Evaluación morfológica e histológica de las etapas de formación de la embriogénesis somática en las variedades Duke 7 y Puebla de aguacate (Persea Americana Mill). Tesis de Ingeniería en Biotecnología, Escuela Politécnica del Ejército. Quito- Ecuador.